Летучие компоненты эфирного масла селекционных форм Laurus nobilis L. в субтропиках России: генотипические различия и оптимизация сроков сбора сырья

Лавр благородный ( Laurus nobilis L.) ценное эфиромасличное растение, широко используемое в пищевой, фармацевтической и косметической промышленности, а также в народной медицине благодаря антибактериальным, антиоксидантным и противовоспалительным свойствам. В статье представлен обзор факторов, определяющих изменчивость летучих компонентов эфирного масла это генотип, фаза вегетации, орган растения, время сбора. Цель настоящей работы установление компонентного состава эфирного масла вегетативных и генеративных органов L. Nobilis в разные периоды вегетации и выявление генотипических особенностей их накопления. Приведены результаты хромато-масс-спектрометрического анализа (ГХ-МС) четырех селекционных форм лавра, выращенных во влажных субтропиках России (Черноморское побережье Краснодарского края). Изучаемые компоненты эфирного масла переводили из анализируемых образцов в газовую фазу путем нагревания измельченной навески при вибрационном перемешивании в замкнутом объеме в присутствии воды. С помощью базы данных масс-спектров идентифицировано более двадцати компонентов, из которых 8 являются общими как для листьев, так и для генеративных органов. Установлено, что доминирующим компонентом эфирного масла листьев и цветков всех изученных форм является 1,8-цинеол (эвкалиптол). Помимо этого, и в вегетативных, и в генеративных органах выявлены α-туйен (ориганен), 1R-α-пинен, β-пинен, изотерпинолен, β-туйен, β-терпинен, α-феллендрен, 4(10)-туйен (сабинен), m-цимен и o-цимен, а также p-мента-1,8-диен (лимонен). Выявлена существенная сезонная динамика: содержание эвкалиптола в листьях возрастает с 50 % в июне до 90 % в июле, при этом июньский сбор характеризуется более разнообразным компонентным составом. Показано, что листья богаче летучими веществами, чем цветки, однако цветки содержат около 80 % эвкалиптола и могут служить дополнительным источником сырья. Обнаружены генотипические различия, образец № 2 перспективен для селекции на стабильно высокое содержание 1,8-цинеола, а образец № 1 на качественное разнообразие летучего комплекса. Для получения эфирного масла с максимальным выходом 1,8-цинеола (88-95 %) целесообразно проводить сбор листьев в июле, для получения поликомпонентного масла с широким спектром биологической активности в июне. В перспективе планируется изучение корреляции между погодными условиями, фенологической фазой и накоплением второстепенных метаболитов, а также будет проведено молекулярно-генетическое маркирование хемотипов.

1. Рындин А. В., Кулян Р. В. Лавр благородный (Laurus nobilis), биология, распространение, селекция, Субтропическое и декоративное садоводство. 2025;95:153-164. DOI: 10.31360/2225-3068-2025-95-153-164.

2. Kilic A., Hafizoglu H., Kollmannsberger H. et al. Volatile constituents and key odorants in leaves, buds, flowers, and fruit of Laurus nobilis L., J. Agric. Food Chem. 2004;52:1601-1606. DOI: 10.1021/jf0306237.

3. Ben Saad R., Ben Romdhane W., Wiszniewska A. et al. Rosmarinus officinalis L. essential oil enhances salt stress tolerance of durum wheat seedlings through ROS detoxification and stimulation of antioxidant defense, Protoplasma. 2024;261(6):1207-1220. DOI: 10.1007/s00709-024-01965-8.

4. Paparella A., Nawade B., Shaltiel-Harpaz L. et al. Review of the botany, volatile composition, biochemical and molecular aspects, and traditional uses of Laurus nobilis, Plants (Basel). 2022;11(9):1209. DOI: 10.3390/plants11091209.

5. Ordoudi S.A., Papapostolou M., Nenadis N. et al. Bay laurel (Laurus nobilis L.) essential oil as a food preservative source: Chemistry, quality control, activity assessment, and applications to olive industry products, Foods. 2022;11(5):752. DOI: 10.3390/foods11050752.

6. Semiz G., Günal B., Armağan M. Essential oil composition of two endemic Nepeta L. (Lamiaceae) taxa from Southwestern Turkey, International Journal of Secondary Metabolite. 2022;9(2):158-165. DOI: 10.21448/ijsm.1078429.

7. Dobroslavić E., Repajić M., Dragović-Uzelac V. et al. Isolation of Laurus nobilis leaf polyphenols: a review on current techniques and future perspectives, Foods. 2022;11(2):235. DOI: 10.3390/foods11020235.

8. Mehani M., Goumni Z., Salhi A. et al. Laurus nobilis L. and the Study of its Biological Activity in vitro, Phytotherapie. 2018;17(5). DOI:10.3166/phyto-2018-0084.

9. Ilic Z. S., Stanojević L. P., Milenkovic L. et al. Chemical profiling of essential oils from main culinary plants Bay (Laurus nobilis L.) and Rosemary (Rosmarinus officinalis L.) from Montenegro, Horticulture. 2024;10(12):1249. DOI: 10.3390/horticulturae10121249.

10. Boussaoudi I., Farihi A., Ousman B. M. et al. Phytochemical composition and antioxidant efficacy of Laurus nobilis L.: impact of sex, plant stage, and extraction solvents, Front. Sustain. Food Syst. 2025;9:1579216. DOI: 10.3389/fsufs.2025.1579216.

11. Fantasma F., Samukha V., Aliberti M. еt al. Essential oils of Laurus nobilis L.: From chemical analysis to in silico investigation of anti-inflammatory activity by soluble epoxide hydrolase (sEH) inhibition, Foods. 2024;13(14):2228. DOI: 10.3390/foods13142282

12. Dario K., Dunkić V., Srđan M. et al. One-year seasonal variation in the content of volatile compounds in bay laurel leaves, Horticulture. 2025;11(3):241. DOI: 10.3390/horticulturae11030241.

13. Hulea A., Imbrea F., Oarga D. et al. Chemical profi ling, ampicillin interaction patterns, and exploratory molecular docking of lauraceae essential oils, International Journal of Molecular Sciences (IJMS). 2026;27(3):1447. DOI: 10.3390/ijms27031447.

14. Elkiran O., Veyisoglu A., Avsar C. et al. Comparative chemical profiling of Laurus nobilis L. leaf essential oils based on ontogenetic and locational variabilities: investigation of antioxidant and antimicrobial activities, Food Measure. 2026;20:727-745. DOI: 10.1007/s11694-026-04531-3.

15. Borozan A. B., Bordean D.-M., Misca C. et al. Laurus nobils L. phytochemical profile, bioactivity and less known or unexplored aspects. A short review, Journal of Horticulture Forestry and Biotechnology. 2025;29(2):419-428. DOI: 10.59463/nxmx7w81.

16. Kendir G., Ozek G., Köroğlu A. et al. The quality evaluation of the laurel leaf samples sold in the market under the name of «Defne Yaprağı», Protoplasma. 2023;261(2):1-14. DOI: 10.1007/ s00709-023-01897-9.

17. Veyisoğlu A., Karabörk M., Tatar D. et al. Determination of chemical composition and in vitro antimicrobial activity of Thymus longicaulis subsp. longicaulis plant extracts and essential oil, Kahramanmaraş Sütçü İmam Üniversitesi Tarım ve Doğa Dergisi. 2026;Advanced Online Publicatio:1380-1391. DOI: 10.18016/ksutarimdoga.vi.1829240.

18. Elhouda Tahiri N., Soulo N., El Ghouizi A. et al. Volatile profile, in silico toxicity prediction, and antioxidant and antimicrobial activities of Laurus nobilis L. essential oil from distinct geographical locations, Chemical Review and Letters. 2024;75:884-894. DOI: 10.22034/crl.2024.445481.1300.

19. Przeor M. Some common medicinal plants with antidiabetic activity, known and available in Europe (A Mini-Review), Pharmaceuticals. 2022;15(1);264-275. DOI: 10.3390/ph15010065.

20. Peña-Ortiz M., Serrano L., Romero A. A. et al. Bay leaves extract as active additive for food protective coatings, Foods. 2023;12(20):3741. DOI: 10.3390/foods12203741.

21. Витенберг А. Г., Иоффе Б. В., Борисов В. Н. Использование равновесия жидкость-пар для газохроматографического определения микропримесей (обзор), Журнал аналитической химии. 1974;29(9):1795-1804.

22. Витенберг А. Г. Равновесная модель в описании газовой экстракции и парофазного анализа, Журнал аналитической химии. 2003;58(1):2-15.

23. Bekhterev V. N., Malyarovskaya V. I. Rapid HPLC method of scopoletine determination in Weigela leaves based on one-step sample preparation by extractive freezing-out, Mendeleev Communications. 2019;29:592-594. DOI: 10.1016/j.mencom.2019.09.039.

24. Kolb B. Headspace sampling with capillary columns, J. of Chromatography A. 1999;842:163-205.

25. Столяров Б. В., Савинов И. М., Витенберг А. Г. Руководство к практическим работам по газовой хроматографии. Под ред. Б. В. Иоффе. Л.: Химия, 1988.

26. Чупахина Т. А. Избранные главы химии. Химия природных соединений. Терпеноиды. Симферополь: ФГАОУ ВО «Крымский федеральный университет имени В.И. Вернадского», 2019, 52 с.

27. Паштецкий В. С., Тимашева Л. А., Пехова О. А. и др. Эфирные масла и их качество. Симферополь: ИТ «АРИАЛ», 2021, 212 с. ISBN 978-5-907506-16-9.

28. Polatoglu K. «Chemotypes» A Fact that should not be Ignored in Natural Product Studies, The Natural Products Journal. 2013;3(1):10-14.