Влияние минерального цеолитсодержащего комплекса на микробиологические характеристики субстрата при выращивании посадочного материала Rubus fruticosus L. в условиях защищенного грунта

При выращивании растений рода Rubus в защищенном грунте большое значение уделяется качеству субстрата, особенно его микробиологическим характеристикам, так как в этих условиях складываются благоприятные условия для развития патогенов. Добавление в субстрат минерального цеолитсодержащего комплекса (МЦК) снижает риск заражения фитопатогенами благодаря его ценным физическим и химическим свойствам. Целью работы являлась оценка влияния минерального цеолитсодержащего комплекса на состав микробиоты субстрата при выращивании посадочного материала ежевики в условиях зимней теплицы. Биологическими объектами в экспериментах являлись растения Rubus fruticosus L., а также выделившиеся микроорганизмы. В исследовании применяли общепринятые методы микробиологического анализа. Оценка обсемененности микроорганизмами различных фракций исследуемого комплекса: 0,001-0,002 мм, 0,5-1,0 мм и 2,0-4,0 мм выявила уменьшение числа колониеобразующих единиц (КОЕ) бактерий с 5,3×10⁶ до 1,5×10⁶ при увеличении размера гранул. В варианте с наименьшим размером частиц обнаружены споры гриба Penicillium. Это связано с тем, что мелкие гранулы в большей степени подвержены контаминации с загрязненным воздухом. Также установлено, что в присутствии МЦК число КОЕ в водной суспензии грибов Fusarium oxysorum Schltdl. и Alternaria alternatа (Fr.) Keissl. снижалось в 7 и 8 раз соответственно. При добавлении исследуемого комплекса в торфяную смесь в концентрации 10, 15 и 20 % отмечалось снижение числа КОЕ грибов в среднем более чем в 5 раз. После выращивания ежевики в течение вегетационного периода патогенные грибы родов Cladоsporium, Alternaria, Fusarium встречались преимущественно в субстрате без МЦК. В торфяной смеси с содержанием исследуемого комплекса 10 % Cladоsporium, Alternaria насчитывалось в среднем в 4,5 раза меньше, а грибы Fusarium не были обнаружены. Результаты проведенных исследований могут служить научным обоснованием для использования МЦК с целью снижения инфекционной нагрузки на растения в процессе культивирования посадочного материала R. fruticosus в условиях теплицы.

1. Легкая Л. В., Радкевич Д. Б., Емельянова О. В. Возделывание малины и ежевики в защищенном грунте. Плодоводство. 2013;1(25):521-532.

2. Папихин Р. В., Муратова С. А. Влияние цеолита на адаптацию микрорастений представителей рода Rubus, Достижения науки и техники АПК. 2013;12(36):18-23. DOI: 10.53859/02352451_2022_36_12_18.

3. Козлов А. В., Куликова А. Х., Уромова И. П. Влияние высококремнистых пород (диатомита, цеолита и бентонитовой глины) на активность олиготрофного и автохтонного микробного пула дерново-подзолистой почвы, Вестник Томского государственного университета. Биология. 2017;40:45-65.

4. Куликова А. Х. Цеолиты как кремниевое удобрение сельскохозяйственных культур. Кремний и жизнь. Кремнистые породы в сельском хозяйстве. Матер. междунар. научнопракт. конференции, посвященной 65-летию Ульяновской ГСХА. Ульяновск: ФГБОУ ВО Ульяновский ГАУ, 2021,75-82.

5. Шабаев В. П., Бочарникова Е. А., Остроумов В. Е. Ремедиация загрязненной кадмием почвы при применении стимулирующих рост растений ризобактерий и природного цеолита, Почвоведение. 2020;6:738-750. DOI: 10.31857/S0032180X20060118.

6. Мотина Т. Ю., Дегтярева И. А., Прищепенко Е. А., & Бабынин Э. В. Урожайность и микробиоценоз гречихи при внесении комплексных биоудобрений, Агрохимический вестник. 2020;2:13-16. DOI: 10.24411/1029-2551-2020-10015.

7. Козлов А. В., Куликова А. Х., Селицкая О. В., Уромова И. П. Устойчивость микробиологической активности дерново-подзолистой почвы в условиях применения диатомита и цеолита, Вестник Томского государственного университета. Биология. 2019;46:26-47.

8. Пищиков Г. Б., Минухин Л. А. Адсорбция микроорганизмов на твердых сорбентах в биотехнологических аппаратах непрерывного действия, Аграрный вестник Урала. 2017;12(166):65-69.

9. Кулагина Е. М., Громова Е. Ю., Юсупова Р. И., Багаутдинов Ф. Ф., & Галяметдинов Ю. Г. Активированный цеолит как компонент органоминерального удобрения, Вестник Технологического университета. 2020;11(23):9-12.

10. Белова И. В., Точилина А. Г., Соловьева И. В., Новикова Н. А., Ефимов Е. И., Иванова Т. П., Жирнов В. А. Использование цеолитов в составе иммобилизованных мультипробиотиков, Медицинский альманах. 2014;2(32):74-77.

11. Куликова А. Х., Яшин Е. А., Черкасов М. С. Эффективность цеолита, в том числе модифицированного, в качестве удобрения кукурузы, Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2020;3(51):76-84.

12. Исакова В. Г., Оруджева Н. И. Влияние биогумуса и цеолита на биологические показатели орошаемых лугово-серых почв: Эволюция почв и развитие научных представлений в почвоведении: сб. науч. трудов междунар. науч. конференции, посвященной 90-летию со дня рождения Бурлаковой Л. М., Барнаул, 2022, 247-251.

13. Чернов А. Н., Афордоаньи Д. М., Халиллуллина Г. Р., & Газизов Р. Р. Микробный фон и концентрация водородных ионов нативного цеолита. Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. 2020;4(244):232-237. DOI: 10.31588/2413-4201-1883-244-4-232-237.

14. Чернов А. Н., Прищепенко Е. А., Халиллуллина Г. Р., & Афордоаньи Д. М. Определение оптимальной фракции активированного цеолита по концентрации водородных ионов для изменения реакции среды. Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. 2020;4(244): 238-242. DOI: 10.31588/2413-4201-1883-244-4-238-242.

15. Волкова Е. С. Баланс элементов питания в почве и урожайность озимой пшеницы на фоне внесения кремниевых удобрений на черноземах лесостепи Поволжья. Кремний и жизнь. Кремнистые породы в сельском хозяйстве. Матер. междунар. научно-практ. конференции, посвященной 65-летию Ульяновской ГСХА. Ульяновск: ФГБОУ ВО Ульяновский ГАУ, 2021, 32-40.

16. Матыченков В. В. Роль кремния в организмах и почвах. Кремний и жизнь. Кремнистые породы в сельском хозяйстве. Матер. междунар. научно-практ. конференции, посвященной 65-летию Ульяновской ГСХА. Ульяновск: ФГБОУ ВО Ульяновский ГАУ, 2021, 83-91.

17. Минаева О. М., Акимова Е. Е., Зюбанова Т. И., Терещенко Н. Н. Биопрепараты для защиты растений: оценка качества и эффективности. Томск: Издательский Дом Томского государственного университета, 2018, 130 с.

18. Беляев А. А., Панина Е. Н., Матченко Н. С., Бакланова Г. И. Перидерма как сортовой иммунологический фактор в побегах малины, Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2014;4:54-61.

19. Cong Y. L., Liu Z. H., Lu B. H., Yang L. N., Wang X., Gao J. Alternaria tenuissima causing Alternaria leaf spot on Rubus crataegifolius in Jilin Province, China. Plant Disease. 2016;11(100).2321. DOI: 10.1094/PDIS-01-16-0120-PDN. 21. Delisle-Houde M., Dionn, A., Demers F., Tweddell R. J. Cladosporium Fruit Rot of Raspberry Caused by Cladosporium pseudocladosporioides in the Québec Province. Plant Disease. 2024;2(108):526. DOI: 10.1094/PDIS-08-23-1657-PDN.

20. Ghazanfar M. U., Raza M., Raza W., Qamar M. I. Trichoderma as potential biocontrol agent, its exploitation in agriculture: a review. Plant Protection. 2018;3(2):109-135.

21. Харитончик А. Р. Выделение и изучение изолятов грибов рода Триходерма. Биологически активные препараты для растениеводства. Минск, 2020, 192 с.