Культуральное разнообразие изолятов возбудителя клястероспориоза в насаждениях сливы домашней на юге России

Наиболее экономически значимым среди грибных патогенов, поражающих косточковые культуры в России и мире, является Wilsonomyces carpophilus (Lév.) Adask., J. M. Ogawa & E. E. Butler (анаморфа – Claster osporium carpophilum (Lev.) Aderh.), который вызывает клястероспориоз, или дырчатую пятнистость косточковых. Изучение внутривидовой изменчивости патогенного гриба в отдельном регионе позволяет фиксировать изменения, происходящие в популяциях, в том числе оценивать их экологическую приспособленность. Цель исследования заключалась в оценке культурального разнообразия моноспоровых изолятов W. carpophilus, выделенных в насаждениях промышленных садов сливы домашней. Моноспоровые изоляты патогена выделяли из покоящихся пораженных побегов сливы (Prunus domestica L.) сорта ‘Кабардинская Ранняя’, отобранных в промышленных насаждениях центральной подзоны Прикубанской зоны садоводства Краснодарского края. Изоляты выращивали на картофельно-глюкозном агаре и проводили культуральный анализ по комплексу признаков, включавшему: размер, форму, профиль, характер воздушного мицелия, особенности края колонии, окраску и спороношение изолятов. По уникальному набору вариантов культуральных характеристик выделяли морфотип. Скорость роста изолятов определяли на 2, 3, 4, 5, 11, 12, 30-й дни после посева. В результате исследования 17 изолятов возбудителя клястероспориоза была показана высокая вариабельность культуральных характеристик патогена. Размер изолятов на КГА при комнатной температуре на 12-е сутки изменялся в диапазоне 36,0-45,0 мм, скорость роста – в диапазоне 1,3-3,5 мм/день. Однако значимых различий в скорости роста отдельных изолятов отмечено не было. Культуральные характеристики изолятов на 12-й и 30-й дни роста значительно отличались друг от друга. С возрастом существенно изменялись размер и цвет колонии. В сравнении с молодыми колониями, старые культуры имели более темные оттенки воздушного мицелия. Культуральный анализ позволил выделить 5 морфотипов патогена. Наиболее часто встречаемыми были морфотипы 1, 2 и 3, доля которых в общей выборке составила около 80 %. Проведенное исследование показывает высокое внутри популяционное разнообразие W. carpophilus.

1. Borcean A. Wilsonomyces carpophilus (Lév.) and Blume riella jaapii the most harmfull cherytrees pathogens, Research Journal of Agricultural Science. 2024;56(1):22-27.

2. Molnár B., Szabó S., Holb I. J. Temporal dynamics of incidence of shot hole disease aff ected by training systems and cultivar susceptibilities in an integrated plum orchard, Journal of Fungi. 2022;8(6):580. DOI: 10.3390/jof8060580.

3. Khalilabad A. A., Fotouhifar K. B. First detection of Wilsonomyces carpophilus causing leaf spot and shot hole dis ease on Vitis vinifera, Plant Health Progress. 2023;24(1):4-8. DOI: 10.1094/PHP-02-22-0014-SC.

4. Мищенко И. Г. Особенности развития клястероспорио за сливы в Краснодарском крае, «Магарач», Виноградарство и виноделие. 2020;22(4);350-354.

5. Якуба Г. В., Мищенко И. Г. Методологические подходы к разработке параметрических моделей фитосанитарно устойчивых агроценозов яблони и сливы, Плодоводство и виноградарство Юга России, 2020;63(3):217-239. DOI: 10.30679/2219-5335-2020-3-63-217-239.

6. Насонов А. И., Якуба Г. В. Характеристика и поли морфизм некоторых качественных признаков моноспоровых изолятов возбудителя парши яблони, Сборник научных трудов ГНБС, 2019;148:109-116. DOI: 10.25684/NBG.sc book.148.2019.11.

7. Супрун И. И., Насонов А. И, Токмаков С. В., Барсукова О. Н., Якуба Г.В. Применение SSR маркеров для изучения генетического разнообразия Venturia inaequalis на Северном Кавказе в агрофитоценозах разного типа, Сельскохозяйственная биология. 2018;53 (1): 170-178. DOI: 10.15389/agrobiology.2018.1.170rus.

8. Nabi A., Shah M. D., Padder B. A et al. Morphological characterization and media preferences in Wilsonomyces car pophilus, the causal agent of shot hole disease of stone fruits in Kashmir, Journal of Pharmacognosy and Phytochemi stry, 2018;7(3):1326-1331.

9. Nabi A. et al. Population structure of Wilsonomyces carpo philus, the shot hole pathogen of stone fruits in Kashmir, India, 2022. DOI: 10.21203/rs.3.rs-1419954/v1.

10. Hammer О., Harper D. A. T., Ryan P.D., PAST: Paleonto logical statistics software package for education and data analy sis, Palaeontologia Electronica. 2001;4(1):9.

11. Pilat T. G., Buga S. F. Role of temperature in fungus Clastesporium carpophilum development-the causal agent of garden plum Clastesporium disease. Proceedings of the Nation al Academy of Sciences of Belarus, Biological Series. 2014;1:50 53. https://vestibio.belnauka.by/jour/article/view/9.

12. Nabi A., Shah M. D., Padder B. A., Dar M. S., Ahmad M. Morpho-cultural, pathological and molecular variability in Thyros troma carpophilum causing shot hole of stone fruits in India. Eur. J, Plant Pathol. 2018;151:613-627. DOI: 10.1007/s10658-017-1398-z.

13. Ahmadpour M. Javan-Nikkhah Y. Ghosta, R. Fatahi. Study on some biological and morphological characteristics of Wilsonomyces carpophilus in West Azerbaijan, Rostaniha. 2009;10:91-109.

14. Ye S., Jia H., Cai G., Tian C., Ma R. Morphology, DNA phylogeny, and pathogenicity of Wilsonomyces carpophilus iso late causing shot-hole disease of Prunus divaricata and Prunus armeniaca in wild-fruit forest of Western Tianshan mountains, China. Forests. 2020;11(3):319. DOI: 10.3390/f11030319.

15. Ahmad R., Abbas A., R azaq A., Hussain I., Qa yyum M. M., Alam S., Batool I., Sakina S. Prevalence and char acteristics of cherry shot-hole disease in Gilgit-Baltistan, Pakistan Journal of Phytopathology. 2023;35(2):439-449. DOI: 10.33866/phytopathol.035.02.0934.