Влияние биопрепаратов на грибную микрофлору посадочного материала при производстве саженцев винограда

Обоснована возможность применения биологических средств для ограничения грибной, в том числе сосудистой инфекции при производстве привитых саженцев винограда. Выявлено влияние предпосадочной антимикробной обработки черенков и прививок на численность и структуру микромицетов на привое и подвое саженцев. В результате анализа суммарной активности препаратов в подавлении грибной и бактериальной микрофлоры установлено, что препараты Фитолавин, ВРК и Триходермин, Ж проявляли эффективное и пролонгированное биоцидное действие. В исследованиях рассматривалось также изменение таксономической структуры комплекса гифомицетов в условиях обработок. При производстве черенков в подавлении Botrytis cinerea Fr., а также сосудистого патогена Phomopsis viticola Sacc. все препараты показали высокую эффективность. При производстве прививок в варианте Хинозола было отмечено недостаточное подавление возбудителя серой гнили и экскориоза. B. cinerea занимал 10,2-11,8 %, P. viticola – 0,2-0,7 % от всего количества гифомицетов, в остальных вариантах опыта отмечено полное подавление данных микопатогенов. В анализах после выкопки саженцев в вариантах Хинозола, ВРП и Фармайода, ГР ежегодно обнаруживалась фузариозная инфекция как на привойной части, так и на подвойной; инфекция экскориоза стабильно выявлялась в подвойной части и в один год – в привойной. Была проведена оценка биологической эффективности биотехнологии (комплекса обработок биопрепаратами) в снижении заражения трахеомикозной инфекцией растений. Были выделены два перспективных биопрепарата с наибольшей эффективностью в подавлении трахеомикозной инфекции – Фитолавин, ВРК 0,4 % и Триходермин, Ж 0,5 %, которые обладают достаточно высокой фунгицидной активностью, адаптивным регуляторным воздействием в целом на структуру микромицетов, не вызывая при этом резких колебаний отдельных групп грибов.

1. Doroshenko N., Puzirnova V. Biotechnological methods of preservation of the grape gene pool in the in vitro collection, BIO Web Conf. 2020;25:5. DOI: 10.1051/bioconf/20202504001.

2. Fizikova A., Tukhuzheva Z., Zhokhova L. et al. A New Approach for CRISPR/Cas9 Editing and Selection of Pathogen-Resistant Plant Cells of Wine Grape cv. ‘Merlot’, International Journal of Molecular Sciences. 2024;25(18):10011. DOI: 10.3390/ijms251810011.

3. Egorov E., Shadrina Zh., Yurchenko E., Kochyan G. The role of biologization of processes in increasing the technological and economic effi ciency of viticulture, BIO Web of Conferences. 2024;108:25011. DOI: 10.1051/bioconf/202410825011.

4. Alimadadi N., Pourvali Z., Nasr S. et al. Screening of antagonistic yeast strains for postharvest control of Penicillium expansum causing blue mold decay in table grape, Fungal Biology. 2023;127(3):901-908. DOI: 10.1016/j.funbio.2023.01.003.

5. Langa-Lomba N., Martín-Ramos, P. Casanova-Gascón J. et al. Potential of Native Trichoderma Strains as Antagonists for the Control of Fungal Wood Pathologies in Young Grapevine Plants, Agronomy. 2022;12(2):336. DOI: 10.3390/agronomy12020336.

6. Calvo-Garrido C., Roudet J., Aveline N. et al. Microbial Antagonism Toward Botrytis Bunch Rot of Grapes in Multiple Field Tests Using One Bacillus ginsengihumi Strain and Formulated Biological Control Products, Frontiers in Plant Science. 2019;10:105. DOI: 10.3389/fpls.2019.00105.

7. Hou Y., Duan Y., Wu G. et al. Antibacterial Activity, Probiotic Potential, and Biocontrol Effi cacy of Two Lactic Acid Bacteria Against Penicillium expansum on Fresh Grapes, Foods. 2025;14(3):493. DOI: 10.3390/foods14030493.

8. Юрченко Е. Г., Политова З. С. Биотехнологическая оптимизация производства привитых саженцев винограда, Садоводство и виноградарство. 2016;4:21-32. DOI: 10.18454/VSTISP.2016.4.2842.

9. Yan H.-K., Zhang, C.-C., Nai, G.-J. et al. Microbial Inoculant GB03 Increased the Yield and Quality of Grape Fruit Under Salt-Alkali Stress by Changing Rhizosphere Microbial Communities, Foods. 2025;14(5):711. DOI: 10.3390/foods14050711.

10. Патент РФ на изобретение № 2748323/ 24.05.2021. Бюл. № 15. Малых Г. П., Майстренко Т. А. Способ повышения выхода привитых саженцев винограда. Доступно по: https://fips.ru/iiss/document.xhtml?faces-redirect=true&id=e279c3b04c279fd4978176c159983636. Ссылка активна на 20.08.2025.

11. Martín L, García-García B., Alguacil MDM. Interactions of the Fungal Community in the Complex Patho-System of Esca, a Grapevine Trunk Disease. International Journal of Molecular Sciences. 2022;23(23):14726. DOI: 10.3390/ijms232314726.

12. Travadon R., Lawrence D. P., Moyer M. M., Fujiyoshi P. T. and Baumgartner K. Fungal species associated with grapevine trunk diseases in Washington wine grapes and California table grapes, with novelties in the genera, Cadophora, Cytospora, and Sporocadus. Front. Fungal Biol. 2022;3:1018140. DOI: 10.3389/ff unb.2022.1018140.

13. Beris E., Selim M., Kechagia D. et al. Overview of the Esca Complex as an Increasing Threat in Vineyards Worldwide: Climate Change, Control Approaches and Impact on Grape and Wine Quality. IntechOpen. 2023. DOI: 10.5772/intechopen.105897.

14. Spetik M., Tekielska D. A., Berraf-Tebbal A. et al. Diversity of Botryosphaeriaceae Species Associated with Grapevine Trunk Diseases in the Czech Republic. Diversity. 2023;15(7):800. DOI: 10.3390/D15070800.

15. Ye Q., Jia J., Manawasinghe I. S. et al. Fomitiporia punicata and Phaeoacremonium minimum associated with Esca complex of grapevine in China, Phytopathol Res. 2021;3:11. DOI: 10.1186/s42483-021-00087-w.

16. Юрченко Е. Г., Грачева Н. П. Изучение микозов древесных частей винограда в насаждениях Западного Предкавказья: 3-ий Всерос. съезд по защите растений. СПб.: ВИЗР. 2013;1:296-298.

17. Володин В. А. Экологизация элементов защитных мероприятий на этапе получения привойно-подвойных комби- наций винограда в условиях Крыма: дисс. … канд. с.-х. наук: 06.01.07. Володин Виталий Александрович. М., 2016, 186 с.

18. Лукьянова А. А. Роль микромицетов в этиологии сосудистого некроза саженцев винограда в Анапо-Таманской зоне Краснодарского края: автореферат дисс. … канд. биол. наук: 06.01.07. Лукьянова Анна Александровна. Краснодар, 2011, 21 с.

19. Патент РФ на изобретение № 2626722 / 31.07.2017. Бюл. № 22. Малых Г. П., Малых П. Г., Магомадов А.С., Гвоздик В. И., Яковцева О. Л. Способ и устройство для борьбы с Botrytis cinerea при выращивании привитых саженцев вино- града. Доступно по: https://fi ps.ru/iiss/document.xhtml?faces-redirect=true&id=3b3901e96e892ab9ba34caa83569c6bf. Ссылка активна на 20.08.2025.

20. Теппер Е. З., Шильникова В. К., Переверзева Г. И. Практикум по микробиологии. М.: Дрофа, 2004, 256 с.

21. Саттон Д., Фотергилл А., Ринальди М. Определитель патогенных и условно патогенных грибов. Пер. с англ. К. Л. Тарасова и Ю. Н. Ковалева. Под ред. И. Р. Дорожковой. М.: Мир, 2001, 468 с.

22. Сергеев А. Ю., Александрова А. В., Арзуманян В. Г. и др. Новое в систематике и номенклатуре грибов. М: Общественная национальная академия микологии, 2003, 496 с.

23. Пидопличко Н. М. Грибы – паразиты культурных рас- тений: Определитель: В 3-х т. Киев: Наук. думка, 1977, 300 с.

24. Leslie J. F., Summerell B. A. The Fusarium Laboratory Manual. Oxford: Blackwell Publishing Ltd., 2006, 388 p.