Биологическая активность кожуры и мякоти плодов Pseudocydonia sinensis Schneid

Плоды Pseudocydonia sinensis Schneid. (айвы китайской) являются ценным источником биологически активных соединений. Целью данного исследования было оценить антиоксидантную активность, общее содержание полифенолов, флавоноидов и фенольных кислот в плодах Pseudocydonia sinensis (кожура и мякоть) коллекции Национального ботанического сада им. Н. Н. Гришко (г. Киев, Украина). Все исследуемые образцы (кожура и мякоть) проявляли активность по удалению радикалов DPPH со значениями от 9,31 до 10,23 и от 5,39 до 6,85 мг ТЭ/г (тролокс эквивалент), соответственно. Антиоксидантная активность, определяемая методом антиоксидантного восстановления молибдена, варьировала от 122,0 до 219,31 (кожура) и от 62,19 до 95,44 (мякоть) мг ТЭ/г сухого вещества.

Общее содержание полифенолов в кожуре и мякоти составляло от 53,17 до 78,67 и от 32,31 до 47,41 мг ГКЭ/г (эквивалент галловой кислоты), соответственно. Общее содержание флавоноидов варьировало от 9,15 до 26,18 (кожура) и от 0,55 до 0,87 (мякоть) мг КЭ/г (эквивалент кверцетина). Содержание фенольных кислот в кожуре и мякоти плодов составляло от 4,40 до 8,39 и от 1,12 до 3,97 мг ККЭ/г (эквивалент кофейной кислоты), соответственно. Результаты показали, что экстракты кожуры имели самое высокое содержание биологически активных соединений по сравнению с экстрактами мякоти. Различия между генотипами были значительными по всем наблюдаемым параметрам. Содержание полифенолов имеет высокую положительную корреляцию между антиоксидантной активностью и содержанием фенолов, флавоноидов и фенольной кислоты. Этот вид является потенциальным для размножения и практического использования на Украине.

1. IPGRI. Neglected and Underutilized Plant Species: Strategic Action Plan of the International Plant Genetic Resources Institute. International Plant Genetic Resources Institute, Rome, Italy. International Plant Genetic Resources Institute, 2002, 27 р.

2. Brindza P., Brindza J., Tóth D., Klimenko S. V., Grigorieva O. Slovakian cornelian cherry (Cornus mas L.): Potential for cultivation, Acta Hortic. 2007;760:433-437. https://doi.org/10.17660/ActaHortic,2007;760.59

3. Kucharska A., Szumny A., Sokół-Łętowska A., Piórecki N., Klymenko S. Iridoids and anthocyanins in cornelian cherry (Cornus mas L.) cultivars, Journal of Food Composition and Analysis. 2015;40:95-102. https://doi.org/10.1016/j.jfca.2014.12.016

4. Kucelova L., Grygorieva O., Ivanišová E., Terentjeva M., Brindza J. Biological properties of black mulberry-derived food products (Morus nigra L.), Journal of Berry Research, 2016;6:333343. https://doi.org/10.3233/JBR-160141

5. Klymenko S., Grygorieva O., Brindza J. Less Known Species of Fruit Crops, Slovak University of Agriculture in Nitra, 2017, 104 p. https://doi.org/10.15414/2017.fe-9788055217659

6. Ivanišová E., Grygorieva O., Abrahamová V., Schubertova Z., Terentjeva M., Brindza J. Characterization of morphological parameters and biological activity of jujube fruit (Ziziphus jujuba Mill.), Journal of Berry Research. 2017;7(4):249-260. https://doi.org/10.3233/JBR-170162

7. Vinogradova Yu., Grygorieva O., Vergun O., Brindza J. Morphological characteristics for fruits of Aronia mitschurinii A. K. Skvortsov & Maitul., Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences. 2017;11(1):754-760. https://doi.org/10.5219/845

8. Horčinová Sedláčková V., Grygorieva O., Brindza J. Morphometric characteristic of wild-growing genotypes of elderberry (Sambucus nigra L.) with dark and green fruits. Agrobiodiversity for Improving Nutrition, Health and Life Quality. 2018a;2:250-261. https://doi.org/10.15414/agrobiodiversity.2018.2585-8246.250-261

9. Horčinová Sedláčková V., Grygorieva O., Fatrcová-Šramková K., Vergun O., Vinogradova Y., Ivanišová E., Brindza J. The morphological and antioxidant characteristics of infl orescences within wild-growing genotypes of elderberry (Sambucus nigra L.), Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences. 2018b;12(1):444-453. https://doi.org/10.5219/919

10. Monka A., Grygorieva O., Chlebo P., Brindza J. Morphological and antioxidant characteristics of quince (Cydonia oblonga Mill.) and chinese quince fruit (Pseudocydonia sinensis Schneid.), Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences. 2014;8(1):333340. http://dx.doi.org/10.5219/415 1

11. Choi J. Y., Lee S. M., Lee H. J., Kim Y. -S. Characterization of aroma-active compounds in Chinese quince (Pseudocydonia sinensis Schneid) by aroma dilution analyses, Food Research International. 2018;105:828-835. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2017.12.015

12. Hamauzu Y., Inno T., Kume C., Irie M., Hiramatsu K. Antioxidant and antiulcerative properties of phenolics from Chinese quince, quince, and apple fruits, J Agric Food Chem. 2006;54(3):765-772. http://dx.doi.org/10.1021/jf052236y

13. Hamauzu Y., Nakamura K. Changes in Plasma Phenolic Metabolites of Rats Administered Different Molecular-Weight Polyphenol Fractions from Chinese Quince Fruit Extracts, Journal of Food Biochemistry. 2014;38(4):407-414. https://doi.org/10.1111/jfbc.12067

14. Mihara S., Tateba H., Nishimura O., Machii Y., Kishino K. Volatile components of Chinese quince (Pseudocydonia sinensis Schneid), J Agric Food Chem. 1987;35(4):532-537. https://doi.org/10.1021/jf00076a023

15. Osawa K., Miyazaki K., Imai H., Arakawa T., Yasuda H., Takeya K. Inhibitory effects of Chinese quince (Chaenomeles sinensis) on hyaluronidase and histamine release from rat mast cells (in Japanese with English summary), Natural Medicines. 1999;53:188-193.

16. Kabir F., Sultana S.M., Hossen I., Kurnianta H. Antimicrobial activities of ethanolic extracts of Chinese quince (Pseudocydonia sinensis) pomace, Bangladesh Res Publication J. 2015;11:175-181.

17. Hamauzu Y., Kishida H., Yamazaki N. Gastroprotective property of Pseudocydonia sinensis fruit jelly on the ethanolinduced gastric lesions in rats, Journal of Functional Foods. 2018;48:275282. https://doi.org/10.1016/j.jff.2018.07.026

18. Sanches-Moreno C., Larrauri A., Saura-Calixto F. A procedure to measure the antioxidant efficiency of polyphenols, Journal of Sciences and Food Agricultural. 1998;76(2):270-276. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-0010(199802)76:23.0.CO;2-9

19. Prieto P., Pinera M., Aguilar M. Spectrophotometric quantitation of antioxidant capacity through the formation of a phosphomolybdenum complex: Specific application to the determination of vitamin E, Analytical Biochemistry. 1999;269(2):334-337. https://doi.org/10.1006/abio.1999.4019

20. Singleton V. L., Rossi J. A. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents, American Journal of Enology and Agricultural. 1965;6:144-158.

21. Shafii Z. A., Basri M., Malek E.A., Ismail M. Phytochemical and antioxidant properties of Manilkara zapota (L.) P roen fruit extracts and its formulations for cosmceuetical application, Asian Journal of Plant Science and Research. 2017;7(3):29-41.

22. Farmakopea Polska. 1999. The Polish Farmaceutical Society [online s.a. [cit.2017-01-25 Available at: http://www.ptfarm.pl/?pid=1&language=en

23. Hamauzu Y., Yasui H., Inno T., Kume C., Omanyuda M. Phenolic profile, antioxidant property, and anti-infl uenza viral activity of Chinese quince (Pseudocydonia sinensis Schneid.), quince (Cydonia oblonga Mill.), and apple (Malus domestica Mill.) fruits, J Agric Food Chem. 2005;53(4):928-934. http://dx.doi.org/10.1021/jf0494635