Влияние компонентного состава питательных сред при введении в культуру in vitro эксплантов яблони сортов Прикубанское и Кубанское Багряное

В представленной работе изучены аспекты введения в культуру in vitro двух сортов яблони: Прикубанское и Кубанское Багряное. В задачи входила апробация нового протокола дезинфекции, позволяющего точно нормировать содержание активного хлора в дезинфицирующем растворе, а также изучение регенерационной способности апикальных и пазушных почек яблони сортов Прикубанское и Кубанское Багряное на разных вариантах питательной среды: среда Мурасиге и Скуга (MS) ¼ NH4 NO3 , и среда Кворина-Лепуавра (QL). Использованный протокол дезинфекции позволил получить незначительный уровень контаминация эксплантов грибной инфекцией в нулевом пассаже, что свидетельствует об эффективности апробированного протокола стерилизации. Повышенный уровень бактериальной инфекции у сорта Кубанское Багряное (21,3 % от общего количества инкубированных эксплантов) может являться следствием наличия эндофитной инфекции. По результатам использования двух различных питательных сред было выявлено влияние компонентного состава питательных сред на рост микропобегов из эксплантов. Установили, что выход жизнеспособных микрорастений сорта Прикубанское, выращенных на питательной среде MS ¼ NH4 NO3 составляет 44,4 %, что на 16,4 % выше, чем экспланты, выращенные на среде QL (28 %). Экспланты сорта Кубанское Багряное, в свою очередь, имеют выход жизнеспособных микрорастений на среде MS ¼ NH4 NO3 16,7 %, что на 30,4 % ниже, чем на среде QL (47,1 %). Совокупное влияние генотипа и состава питательной среды на развитие эксплантов было статистически достоверным для изученных показателей. Доля совокупного влияния факторов сорт х среда 74,93 %, влияние генотипа – 20,72 %. Полученные данные свидетельствуют о сортоспецифичности реакции на состав питательной среды при клональном микроразмножении указанных сортов яблони.

1. ГОСТ 34231-2017. Материал посадочный плодовых и ягодных культур. Термины и определения. М.: Стандартинформ, 2017, 12 с. GOST 34231-2017.

2. Romadanova N. V., Mishustina S. A., Matakova G. N., Kuhsnarenko S. V., Rakhimbaev I. R., Reed B. M. In vitro collection of Malus shoot cultures for cryogenic bank development in Kazakhstan. Acta Horticulturae. 2016;1113:271-277.

3. Матушкина О. В., Пронина И. Н. Технология клонального микроразмножения яблони и груши на основе использования новых питательных сред. Сборник научных трудов ГНБС. 2017;144(2):77-81.

4. Бутенко Р. Г. Биология культивируемых клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе. М.: ФБКпресс, 1999, 159 с.

5. Блюднева Е. А., Крицкая Т. А., Кашин А. С. Использование клонального микроразмножения для массового получения посадочного материала декоративных и плодово-ягодных культур в ботаническом саду СГУ. Бюллетень Ботанического сада Саратовского государственного университета. 2013;11:119-131.

6. Ромаданова Н. В., Нурманов М. М., Махмутова И. А., Кушнаренко С. В. Производство супер-элитных саженцев сортов и клоновых подвоев яблони. Вестник науки Казахского агротехнического университета им. С. Сейфуллина (междисциплинарный). 2018;3(98):4-13.

7. Ташматова Л. В., Мацнева О. В., Шахов В. В., Хромова Т. М. Клональное микроразмножение сортов яблони с геном Vf. Современное садоводство – Contemporary horticulture. 2019;4:127-134. DOI:10.24411/2312-6701-2019-10413

8. Матушкина О. В., Пронина И. Н. Клональное микроразмножение яблони и груши в системе производства высококачественного посадочного материала. Агро XXI. 2009;4-6:28-29.

9. Матушкина О. В., Пронина И. Н., Шорников Д. Г. Особенности морфогенеза клонового подвоя яблони М9 в культуре in vitro. Достижения науки и техники АПК. 2019;33(2):14-16. DOI: 10.24411/0235-2451-2019-10204

10. Матушкина О. В., Пронина И. Н. Технология беспересадочного культивирования яблони и груши in vitro. Технологии пищевой и перерабатывающей промышленности АПК-продукты здорового питания. 2016;5:31-37.

11. Трушечкин В. Г., Высоцкий А. В., Леонтьев-Орлов О. А. Размножение клоновых подвоев яблони методом культуры ткани. Сельскохозяйственная биология. 1982;17(4):455-457.

12. Teixeira da Silva J. A., Gulyás А., Magyar-Tábori K. et al. In vitro tissue culture of apple and other Malus species: recent advances and applications. Planta. 2019;249:975-1006. DOI:10.1007/s00425-019-03100-x

13. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 1962;15(13):473-497.

14. Quoirin M., Lepoivre P. Improved medium for in vitro culture of Prunus sp. Acta Hortic. 1977;78:437-442.

15. Лакин Г. Ф. Биометрия. М., 1990, 352 с. Lakin G. F. Biometrics. Moscow, 1990, 352 p. (In Russ.)

16. Щеглов С. Н. Биометрический анализ селекционногенетических исследований. Современные методологические аспекты организации селекционного процесса в садоводстве и виноградарстве. Краснодар: СКЗНИИСиВ, 2012: с. 65-84.

17. Viss R., Brooks E. M., Driver J. A. A simplifi ed method for the control of bacterial contamination in woody plant tissue culture. In vitro Cell. Dev. Biol. 1991;27:42.