

Изучение генотипа винограда Кишмиш № 342 и проявления бессемянности в условиях Анапской ампелографической коллекции
https://doi.org/10.31676/0235-2591-2022-5-10-16
Аннотация
Проведено изучение генотипа винограда Кишмиш № 342 (Кишмиш Венгерский), а также морфологии проявления признака бессемянности у данного сорта. В исследования были включены растения винограда сорта Кишмиш № 342, произрастающие в Анапской ампелографической коллекции. Оценку категории бессемянности проводили в течение трёх лет и сопоставляли с данными погодных условий. Определение массы рудиментов проводили путём извлечения зачатков семян из ягод и их поэтапной дегидратации в сушильном шкафу до неизменяемой конечной массы. Экстракцию ДНК проводили методикой на основе использования буфера ЦТАБ. Генетические исследования выполнены методом полимеразной цепной реакции (ПЦР). ДНК-профилирование проводили с использованием SSR-маркеров (VVS2, VVMD5, VVMD7, VVMD27, VVMD25, VVMD32, VrZAG62, VrZAG79), стандартных для ДНК-паспортизации сортов винограда. Для идентификации аллельного состояния локусов устойчивости к милдью (Rpv3, Rpv12) и оидиуму (Ren1, Ren3, Ren9) в работе были использованы тесно сцепленные микросателлитные маркеры – UDV305, UDV737 (Rpv3) и UDV343, UDV360 (Rpv12), SC8-0071-014, SC47-18 (Ren1), ScORGF15-02, GF15-42 (Ren3) и CenGen6 (Ren9), рекомендованные для подобных работ. Результаты ПЦР-анализа оценивали методом капиллярного электрофореза с использованием автоматического генетического анализатора «Нанофор-05». В результате исследования выявлено варьирование категории бессемянности в погодно-климатических условиях города Анапы в 2019-2021 гг. – от 2 до 4 категории; наибольшая масса рудиментов отмечена в год с наиболее жаркими условиями цветения и с наибольшим накоплением активных температур до периода цветения. Сформирован ДНК-паспорт сорта Кишмиш № 342 (VVS2133 143 VVMD5236 238 VVMD7251 253 VVMD27182 182 VrZAG62188 194 VrZAG79247 255 VVMD25241 255 VVMD32240 272), подтверждено происхождение генотипа (Villard Blanc×Perlette) по данным ДНК-анализа. По результатам ДНК-маркерного анализа показано наличие локусов устойчивости к милдью (Rpv3) и оидиуму (Ren3 и Ren9) в генотипе Кишмиш № 342.
Об авторах
Е. Т. ИльницкаяРоссия
Ильницкая Е. Т. – кандидат биологических наук, заведующая лабораторией сортоизучения и селекции винограда
Краснодар
М. В. Макаркина
Россия
Макаркина М. В. – младший научный сотрудник лаборатории сортоизучения и селекции винограда
Краснодар
Е. Г. Пята
Россия
Пята Е. Г. – младший научный сотрудник лаборатории сортоизучения и селекции винограда
Краснодар
Е. К. Курденкова
Россия
Курденкова Е. К. – младший научный сотрудник лаборатории виноградарства и виноделия
Анапа
Т. Д. Козина
Россия
Козина Т. Д. – лаборант-исследователь лаборатории сортоизучения и селекции винограда
Краснодар
Список литературы
1. Costantini L., Moreno-Sanz P., Nwafor C. C., Lorenzi S., Marrano A., Cristofolini F., Gottardini E., Raimondi S., Ruffa P., Gribaudo I., Schneider A., Grando M. S. Somatic variants for seed and fruit set in grapevine, BMC plant biology. 2021;21(1):1-33. DOI: 10.1186/s12870-021-02865-2.
2. Майстренко Л. А. Интродукция и селекция бессемянных сортов винограда в условиях северной зоны промышленного виноградарства РФ: автореферат диссертации. Новочеркасск, 1998, 27 с.
3. Смирнов К. В. Бессемянные сорта винограда: Энциклопедия виноградарства. Кишинев: Гл. ред. Молд. Сов. Энциклоледии, 1986;1:155-156.
4. Кострикин И. А., Красохина С. И., Ключиков Е.А. Ультраранние и сверхранние сорта и гибридные формы винограда: Часть XVI, Издательство «Эверест», г. Ростов-на-Дону, 2008, 36 с.
5. Трошин Л. П., Радчевский П.П. Виноград: иллюстрированный каталог. Районированные, перспективные, тиражные сорта. Ростов н/Д:Феникс, 2010, 271 с.
6. Кишмиш № 342, 2022, URL: https://vinograd.info/sorta/bessemyannye/kishmish--342.html. Ссылка активна на 06.10.2022.
7. Кислов А. В. Климатология: учебник для студ. учреждений высш. проф. образования. М.: Издательский центр «Академия», 2011, 224 с.
8. Егоров Е. А., Ильина И. А., Петров В. С. и др. Анапская ампелографическая коллекция (биологические растительные ресурсы): монография. Краснодар: ФГБНУ Северо-Кавказский федеральный научный центр садоводства, виноградарства, виноделия, 2018, 194 с.
9. Rogers S. O., Extraction of DNA from milligram amounts of fresh, herbarium and mummified plant tissues, Plant Molecular Biology. 1985;19(1):69-76. DOI: 10.1007/ BF00020088.
10. Zini E., Dolzani C., Stefanini M., Gratl V., Bettinelli P., Nicolini D., Betta G., Dorigatti C., Velasco R., Letschka T., Vezzulli S. R-loci arrangement versus downy and powdery mildew resistance level: a Vitis hybrid survey. International journal of molecular sciences. 2019;20(14):3526. DOI: 10.3390/ijms20143526.
11. Riaz S., Menéndez C. M., Tenscher A., Pap D., Walker M. A. Genetic mapping and survey of powdery mildew resistance in the wild Central Asian ancestor of cultivated grapevines in Central Asia, Horticulture research. 2020;7:104. DOI: 10.1038/s41438-020-0335-z.
12. Lukšić K., Zdunić G., Hančević K., Mihaljević M. Ž., Mucalo A., Maul E., Riaz S., Pejić I. Identification of powdery mildew resistance in wild grapevine (Vitis vinifera subsp. sylvestris Gmel Hegi) from Croatia and Bosnia and Herzegovina, Scientific reports. 2022;12(1), 1-13. DOI: 10.1038/s41598-022-06037-6.
13. Wang Z., Wang Y., Cao X., Wu D., Hui M., Han X., Yao F., Li Y., Li. H., Wang H. Screening and Validation of SSR Molecular Markers for Identification of Downy Mildew Resistance in Intraspecific Hybrid F1 Progeny (V. vinifera), Horticulturae. 2022;8(8):706. DOI: 10.3390/horticulturae8080706.
14. Coleman C., Copetti D., Cipriani G., Hoffmann S., Kozma P., Kovács L., Morgante M., Testolin R., Di Gaspero G. Тhe powdery mildew resistance gene Ren1 co-segregates with an NBSLRR gene cluster in two Central Asian grapevines, BMC Genet. 2009;10:89. DOI: 10.1186/1471-2156-10-89.
15. Zendler D., Schneide P., Töpfe R., Zyprian E. Fine mapping of Ren3 reveals two loci mediating hypersensitive response against Erysiphe necator in grapevine, Euphytica. 2017;213(68):1029. DOI:10.1007/s10681-017-1857-9.
16. Van Heerden C. J., Burger P., Vermeulen A., Prins R. Detection of downy and powdery mildew resistance QTL in a ‘Regent’ х ‘RedGlobe’ population, Euphytica. 2014;200:281-295. DOI: 10.1007/s10681-014-1167-4.
17. Zendler D., Töpfer R., Zyprian E. Confirmation and fine mapping of the resistance locus Ren9 from the grapevine cultivar ‘Regent’, Plants. 2020;10(1):24. DOI: 10.3390/plants10010024.
18. Di Gaspero G., Copetti D., Coleman C., Castellarin S. D., Eibach R., Kozma P., Lacombe T., Gambetta G., Zvyagin A., Cindrić P., Kovács L., Morgante M., Testolin R. Selective sweep at the Rpv3 locus during grapevine breeding for downy mildew resistance, Тheor. Appl. Genet. 2012;124:227-286. DOI: 10.1007/ s00122-011-1703-8.
19. Venuti S., Copetti D., Foria S., Falginella L., Hoffmann S., Bellin D., Cindric P., Kozma P., Scalabrin S., Morgante M., Testolin R., Di Gaspero G. Historical introgression of the downy mildew resistance gene Rpv12 from the Asian species Vitis amurensis into grapevine varieties, PLoSONE. 2013;8(4):e61228. DOI: 10.1371/journal.pone.0061228.
20. Julius Kuhn-Institut. International Variety Catalogue VIVC, URL: http://www.vivc.de. Ссылка активна на 24. 08. 2022.
21. Агрометеорологические бюллетени по территории Краснодарского края. Краснодар: Краснодарский краевой центр по гидрометеорологии и мониторингу окружающей среды, 2019-2021, 580 с.
22. Cadle-Davidson L., Chicoine D., Consolie N. Variation within and among Vitis spp. for foliar resistance to the powdery mildew pathogen Erysiphe necator, Plant disease. 2011;95(2):202-211. DOI: 10.1094/PDIS-02-10-0092.
23. Buonassisi D., Colombo M., Migliaro D., Dolzani C., Peressotti E., Mizzotti C., Velasco R., Masiero S., Perazzolli M., Vezzulli S. Breeding for grapevine downy mildew resistance: a review of “omics” approaches, Euphytica. 2017;213(5):1-21. DOI: 10.1007/s10681-017-1882-8.
Рецензия
Для цитирования:
Ильницкая Е.Т., Макаркина М.В., Пята Е.Г., Курденкова Е.К., Козина Т.Д. Изучение генотипа винограда Кишмиш № 342 и проявления бессемянности в условиях Анапской ампелографической коллекции. Садоводство и виноградарство. 2022;(5):10-16. https://doi.org/10.31676/0235-2591-2022-5-10-16
For citation:
Ilnitskaya E.T., Makarkina M.V., Pyata E.G., Kurdenkova E.K., Kozina T.D. Studying genotype of Kishmish No. 342 and manifestation of parthenocarpy under conditions of the Anapa ampelographic collection. Horticulture and viticulture. 2022;(5):10-16. (In Russ.) https://doi.org/10.31676/0235-2591-2022-5-10-16