Влияние биопрепаратов ПРК «Белый Жемчуг» линии B-Plus на устойчивость к весенним заморозкам, урожайность и качество плодов яблони

На базе лаборатории физиологии устойчивости плодовых растений ФГБНУ ВНИИСПК в 2021-2022 гг. проведены испытания продукции ООО «Группа Компаний АгроПлюс»: фитомодулятор ПРК «Белый Жемчуг Антифриз», фитокорректор ПРК «Белый Жемчуг Дрип Ca+Mg». Опыт был заложен в двух вариантах на участке с темно-серыми лесными почвами, с содержанием гумуса 3-4 %, мощностью гумусового горизонта 30-35 см. Год посадки – 2013, схема посадки – 6.3 м. Объект изучения – сорт яблони селекции ВНИИСПК Синап Орловский, растущий на полукарликовом подвое 54-118. В междурядьях используется естественное залужение, в приствольных полосах гербициды. Варианты опыта: 1 – контроль (обработка водой); 2 – некорневая обработка 1 %-ным раствором ПРК «Белый Жемчуг Антифриз» + 1 %-ным раствором ПРК «Белый Жемчуг Дрип Са+Mg». В каждом опыте 3 повторности. В каждой повторности 5 учетных деревьев. Целью нашего исследования было повышение устойчивости к весенним заморозкам, урожайности и качества плодов яблони на основе использования природного растительного комплекса «Белый Жемчуг Антифриз», 1 %-ный раствор + «Белый Жемчуг Дрип Са+Mg», 1 %-ный раствор, в сложившихся погодных условиях 2021 года. Некорневые обработки фитомодулятором и фитокорректором существенно снизили подмерзание цветков у сорта Синап Орловский при моделировании весенних заморозков: на 6,3 % при -3,5 °С; на 10,4 % при -4,0 °С. Проведенные нами летние некорневые обработки органоминеральной смесью способствовали более интенсивному росту и созреванию плодов на фоне регуляции белково-углеводного обмена, водного режима, фотосинтетической деятельности и донорно-акцепторных отношений лист – плод, что положительно сказалось на увеличение веса плода на 10 г и урожая в 1,8 раза. Результаты исследований позволяют нам сделать вывод, что применение препаратов ПРК «Белый Жемчуг» линии B-PLUS характеризуется комплексным воздействием, которое позволяет увеличить устойчивость к низкотемпературному стрессу в весенний период, повысить урожайность и качества плодов яблони.

1. Гришечкина Л. Д. Агробиологическое и экотоксикологическое обоснование формирование ассортимента фунгицидов для защиты пшеницы: дисс. … д-ра с.-х. наук. Пушкин-СПб: 2018, 395 с.

2. Ahmad A., Ordonez J., Cartujo P., Martos V.remotely Piloted Aircraft (RPA) in Agriculture: a Pursuit of Sustainability. Agronomy. 2021;11:7. DOI:10.3390/agronomy11010007

3. Calvo P., Nelson L., Kloepper J. W. Agricultural uses of plant biostimulants. Plant Soil. 2014;383:3-41. DOI:10.1007/s11104-014-2131-8

4. Van Oosten M. J., Pepe O., De Pascale S., Silletti S., and Maggio A. The role of biostimulants and bioeff ectors as alleviators of abiotic stress in crop plants. Chem. Biol. Technol. Agric. 2017;4(5):1-12. DOI:10.1186/s40538-017-0089-5

5. Yakhin O. I., Lubyanov A. A., Yakhin I. A., and Brown P. H. Biostimulants in plant science: a global perspective. Front. Plant Sci. 2017;7:2049. DOI:10.3389/fpls.2016.02049

6. Shukla P. S., Mantin E. G., Adil M., Bajpai S., Critchley A. T. and Prithiviraj B. Ascophyllum nodosum-Based Biostimulants: Sustainable Applications in Agriculture for the Stimulation of Plant Growth, Stress Tolerance, and Disease Management. Front. Plant Sci. 2019;10:655. DOI:10.3389/fpls.2019.00655

7. Merwad A.-R.M. Eff ect of humic and fulvic substances and Moringa leaf extract on Sudan grass plants grown under saline conditions. Can. J. Soil Sci. 2017;97:703-716.

8. Milić B., Tarlanović J., Keserović Z., Magazin N., Miodragović M., Popara G. Bioregulators can improve fruit size, yield and plant growth of northern highbush blueberry (Vaccinium corymbosum L.). Sci. Hortic. 2018;235:214-220. DOI:10.1016/j.scienta.2018.03.004

9. Younis A., Akhtar M.S., Riaz A., Zulfi qar F., Qasim M., Farooq A., et al. Improved cut fl ower and corm production by exogenous moringa leaf extract application on gladiolus cultivars. Acta Sci. Pol. Hortorum Cultus. 2018;17:25-38. DOI:10.24326/asphc.2018.4.3

10. Gong X., Wei L., Yu X., Li S., Sun X., Wang X. Eff ects of rhamnolipid and microbial inoculants on the vermicomposting of green waste with Eisenia fetida. PLoS ONE. 2017;12(1)e0170820. DOI:10.1371/journal.pone.0170820

11. Lei T., Sun X.H., Guo X.H., Ma J.J. Quantifying the relative importance of soil moisture, nitrogen, and temperature on the urea hydrolysis rate. Soil Sci. Plant Nut. 2017;63(3):225-232. DOI:10.1080/00380768.2017.1340813

12. Rao C. S., Grover M., Kundu S., Desai S. Central Research Institute for Dry land Agriculture, Indian Council of Agricultural Research (ICAR), Hyderabad, IndiaEncyclopedia of Soil Science. 2017: Soil Enzymes, 3rd ed., 2100-2107. DOI:10.1081/E-ESS3-120052906

13. Rouphael Y., Cardarelli M., Bonini P., Colla G. Synergistic action of a microbial-based biostimulant and a plant derivedprotein hydrolysate enhances lettuce tolerance to alkalinity and salinity. Front Plant Sci. 2017;8:1-12. DOI:10.3389/fpls.2017.00131

14. Hermosa R., Viterbo A., Chet I., and Monte E. Plant-benefi cial eff ects of Trichoderma and of its genes. Microbiology. 2012;158:17-25. DOI:10.1099/mic.0.052274-0

15. Studholme D. J., Harris B., Le Cocq K., Winsbury R., Perera V., Ryder L., et al. Investigating the benefi cial traits of Trichoderma hamatum GD12 for sustainable agriculture – insights from genomics. Front. Plant Sci. 2013;4:258. DOI:10.3389/fpls.2013.00258

16. Hussein M. A. M., Hassan M. H. A., Abo-Elyousr K. A. M. Biological control of Botrytis allii by Trichoderma viride on onion Allium cepa. World Appl Sci J. 2014;32:522-526. DOI:10.5829/idosi.wasj.2014.32.03.933

17. Mendoza-Mendoza A., Zaid R., Lawry R., Hermosa R., Monte E., Horwitz B. A., et al. Molecular dialogues between Trichoderma and roots: role of the fungal secretome. Fungal Biol. Rev. 2018;32:62-85. DOI:10.1016/j.fbr.2017.12.001

18. Lorito M., and Woo S. L. “Trichoderma: a multi-purpose tool for integrated pest management,” in Principles of Plant-Microbe Interactions, ed B. Lugtenberg (Cham: Springer International Publishing). 2015, 345-353. DOI:10.1007/978-3-31908575-3_36

19. Vinocur, B., and Altman, A. Recent advances in engineering plant tolerance to abiotic stress: achievements and limitations. Curr. Opin. Biotechnol. 2005;416:123-132. DOI:10.1016/j.copbio.2005.02.001

20. Sharma H. S. S., Fleming C., Selby C., Rao J. R., and Martin T. Plant biostimulants: a review on the processing of macroalgae and use of extracts for crop management to reduce abiotic and biotic stresses. J. Appl. Phycol. 2014;26:465-490. DOI:10.1007/s10811-013-0101-9

21. Федулов Ю. П., Котляров В. В., Доценко К. А. Устойчивость растений к неблагоприятным факторам среды: учеб. пособие. Краснодар: КубГАУ, 2015, 64 с.

22. Сабирова Т.П., Сабиров Р.А. Влияние биопрепаратов на продуктивность сельскохозяйственных культур. Агрономия. 2018;3(43):18-22.

23. Ожерельева З. Е., Прудников П. С., Зубкова М. И., Кривушина Д. А., Князев С. Д. Определение морозостойкости земляники садовой в контролируемых условиях. Орел: ВНИИСПК, 2019, 25 с.

24. Туркина М. В., Соколова C. B. Изучение мембранного транспорта сахарозы в растительной ткани. Физиология растений. 1972;1(5):912-919.

25. Прудников П. С., Ожерельева З. Е. Физиолого-биохимические методы диагностики устойчивости плодовых культур к засухе и гипертермии. Орел: ВНИИСПК, 2019, 46 с.

26. Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур: под ред. Седова Е. Н. и Огольцовой Т. П. Орел: ВНИИСПК, 1999, 608 с.

27. Доспехов Б. А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований): учебное пособие. М.: Агропромиздат, 1985, 351 с.

28. Эржапова Р. С., Эржапова Р. С. Физиология растений. Водный режим растений. Учебное пособие. Грозный: Издательство ЧГУ, 2015, 128 с.

29. Cao Y.-Y., Yang M.-T., Li X., Zhou Z.-Q., Wang X.-J., Bai J.-G. Exogenous sucrose increases chilling tolrrance in cucumber seedlings by modulating antioxidant enzyme activity and regulating proline and soluble sugar contents. Sci.Horti. 2014;179:67-77.

30. Чудинова Л. А., Суворов В. И. Роль некоторых низкомолекулярных соединений в механизме перекрестной адаптации растений. Вестник Пермского университета. 2011;1:17-20.

31. Попова В. П., Сергеева Н. Н., Фоменко Т. Г., Ярошенко О. В., Ненько Н. И. Принципы повышения устойчивости садовых ценозов к стресс-факторам и изменению уровня почвенного плодородия. Научные труда Северо-Кавказкого федерального научного центра садоводства, виноградарства, виноделия. 2019;23:89-99.

32. Фоменко Т. Г., Попова В. П., Ненько Н.И., Шадрина Ж.А. Разработка регламентов применения регулятора роста Регалис в интенсивных насаждениях яблони. Агрохимический вестник: научно-практический журнал. 2018;3:51-55.

33. Калмыкова О. В. Эффективность применения биопрепаратов в яблоневом саду в условиях нижнего Поволжья. Вестник Алтайского государственного аграрного университета 2014;4(115):20-23.

34. Пантия Г. Г., Янушевская Э. Б., Михайлова Е. В., Карпун Н. Н. Оценка эффективности иммуноиндукторов в повышении неспецифической устойчивости яблони к парше. Защита и карантин растений. 2019;7:33-35.

35. Каширская Н. Я., Цуканова Е. М., Кочкина А. М. Система защиты насаждений яблони от парши с применением индукторов устойчивости. Плодоводство и ягодоводство России. 2014;XXXX(1):152-157.

36. Каширская Н. Я., Кочкина А. М. Современные системы защиты насаждений яблони от парши. Достижения науки и техники АПК. 2019;33(2):50-51. DOI:10.24411/02352451-2019-10212.