Biotechnological optimisation of the gafted grape sampling production

The main research objective was to study if symbiotic micro-organisms can be used in high quality grape grafted saplings production technologies in nursery gardens. For the purpose the laboratory and field methods were used. Some variants with fungus-aulophyte introduction as well as spontaneous inoculation were compared. The standard industry techniques were used to define the biological efficiency and grape saplings unification/commonality indicators. The number of the main ecologotrophic microorganisms were assessed by the means of soil suspension inoculation on the solid nutritional medium, the mineralisation process intensity indicators were defined. Sapling root inoculation with Arbuscular mycorrhizal fungi positively influenced the environmental stress adaptation of the plant, which was observed as an increased kidney blooming dynamics which was 1,3-2 times higher in comparison with control; and the initial foliage growth dynamics was 1,3-2 times more intensive in the fi rst two weeks after planting comparing with the control. Biological activity efficiency of the elevated grape plant part was apparent; the leaf surface area was expanded by 14,0-42,1 %, the scion average length pulled out by 10,8-28,5 %, leaf surface area growing was significantly more intensive in June-August period. Risogenesis was stimulated - the total number of roots increased by 1,3-1,6 times, 2 mm roots increased by 1,2-2,6 times, the total thickness of roots increased by 1,3-1,8 times. Microbiological activity growth of the soil rhizosphere was observed: the quantity of ammonifiers grew by 1,6 times, mineral nitrogen immobilisers increased more than by 2,5 times, oligonitrofils - by 3,1 times, pedotrofs - by 3, 5 times, micromycetes - by 1,7 times. Steady growth of grape saplings survival in the nursery in environmental stressful conditions is recorded (12,0-27,1 %) as well as an increased standard saplings exit (by 19-24 %).

привитые саженцы винограда, симбиотические микроорганизмы, арбускулярная микориза, микробиологическая активность почвы ризосферы, биологическая продуктивность, приживаемость, стандартность, grafted grapes saplings, symbiotic microorganisms, arbuscular mycorrhiza, soil microbiological activity, rhizosphere, biological efficiency, survival, unification

1. Радчевский П. П., Печкуров К. О., Дух А. Е. Влияние физиологически активных веществ на выход и качество виноградных саженцев. [Электронный ресурс]. URL: http://lib.convdocs.org/docs/index-115263.html. (дата обращения 12.04.2015)

2. Никольский М. А., Панкин М. И., Курманкулов Н. Б., Визер С. А., Ержанов К. Б. Использование регуляторов роста растений при производстве привитых саженцев винограда // Достижения, проблемы и перспективы развития отечественной виноградо-винодельческой отрасли на современном этапе: Матер. междунар. науч.-практ. конф. - Новочеркасск: Изд-во ГНУ ВНИИВиВ Россельхозакадемии, 2013. - С. 154-161.

3. Радчевский П. П., Мороз Н. Б., Трошин Л. П. Применение биологически активных веществ гумата при выращивании виноградного посадочного материала // Научн. журн. КубГАУ, 2010. - №60(06) [Электронный ресурс]. URL: http://ej.kubagro.ru/2010/06/pdf/28.pdf (дата обращения 21.07.2015).

4. Юрченко Е. Г. Биологические методы контроля вредных организмов в адаптивно-интегрированной системе защиты виноградников // Разработки, формирующие современный облик виноградарства: монография. - Краснодар: ГНУ СКЗНИИСиВ, 2011. - С. 215-252.

5. Петров В. С., Нудьга Т. А., Павлюкова Т. П., Талаш А. И., Юрченко Е. Г. Биологизация интенсификационных процессов в виноградарстве // Виноделие и виноградарство, 2012. - № 5. - С. 10-12.

6. Трошин Л. П. Ампелография и селекция винограда. - Краснодар: Изд-во «Вольные мастера», 1999. - 138 с.

7. Мельник С. А., Щигловская В. И. Ампелометрический метод определения листовой поверхности виноградного куста // Тр. Одесского СХИ. Т. VIII. - Одесса, 1957. - С. 69-75.

8. Методическое и аналитическое обеспечение организации и проведения исследований по технологии производства винограда / Под ред. К. А. Серпуховитиной. - Краснодар: ГНУ СКЗНИИСиВ, 2010. - 182 с.

9. Доспехов Б. А. Методика полевого опыта. - М.: Агропромиздат, 1985. - 416 с.

10. ГОСТ Р 53025-2008 Посадочный материал винограда (саженцы). Техн. условия. - М.: Стандартинформ, 2009. - 6 с.

11. Теппер Е. З., Шильникова В. К., Переверзева Г. И. Практикум по микробиологии. - М.: Дрофа, 2004. - 256 с.

12. Енкина О. В., Коробский Н. Ф. Микробиологические аспекты сохранения плодородия черноземов Кубани. - Краснодар, 1999. - 150 с.

13. Renker C., Heinrichs J., Kaldorf M. Combining nested PCR and restriction digest of the internal transcribed spacer region to characterize arbuscular mycorrhizal fungi on roots from the field. - V. 13. - Mycorrhiza, 2003. - P. 191-198.

14. Маршунова Г. Н., Якоби Л. М. Принципы отбора эффективных культур эндомикоризных грибов // В кн.: Микроорганизмы в сельском хозяйстве. - Кишинев, 1988. - С. 166-168.

15. Кирпичников Н. А., Завалин А. А., Волков А. А., Чернышкова Л. Б., Юрков А. П., Якоби Л. М., Кожемяков А. П. Эффективность фосфорных удобрений на периодически известкуемой почве при обработке семян ячменя и клевера биопрепаратами // Агрохимия, 2012. - № 11. - С. 16-27.

16. Юрков А. П., Степанова Г. В., Якоби Л. М., Кожемяков А. П., Сергалиев Н. Х., Аменова Р. К., Джапаров Р. Ш., Володин М. А., Тлепов А. С., Баймуканов Е. Н. Продуктивность яровой и озимой пшеницы при использовании гриба арбускулярной микоризы Glomus intraradices в условиях дефицита влаги // Кормопроизводство, 2012. - № 12. - С. 18-24.

17. Bago B., Pfeffer P. E., Shachar-Hill Y. Carbon metabolismand transport in arbuscular mycorrhizas // Plant Physiology, 2000. - Vol. 124. - P. 949-957. [Электронный ресурс]. URL: http://www.plantphysiol.org. (дата обращения 05.05.2014).

18. Marsh J. F., Schultze M. Analysis of arbuscular mycorrhizas using symbiosis-defective plant mutants // New. Phytologist, 2001. - V. 150. - P. 525-532.

19. Troncoso A., Liñán J., Carretero C. L., García J. L., Troncoso J., García M., Cantos M. Influence of the mycorrizal Glomus intraradices on the development of in vitro raised olive seedlings during acclimation phase // ISHS Acta Horticulturae 791: V International Symposium on Olive Growing [Электронный ресурс] URL: http://www.actahort.org/books/791/791_32.htm (дата обращения 05.05.2014).

20. Агрометеорологический бюллетень. Федеральная служба России по гидрометеорологии и мониторингу окружающей среды. Северо-Кавказское межрегиональное территориальное управление по гидрометеорологии и мониторингу окружающей среды, Краснодарский краевой центр по гидрометеорологии и мониторингу окружающей среды. - Краснодар, 2012, 2013, 2014.

21. Малиновская И. М., Сорока А. П. Протекание микробиологических процессов в почве двухлетнего перелога // Вестник Полтавской государственной аграрной академии. - Полтава: ННЦ «Институт земледелия НААНУ», 2010. - № 4. - С. 24-29.