

Особенности клонального микроразмножения клонового подвоя сливы ПК СК 1
https://doi.org/10.31676/0235-2591-2024-2-5-12
Аннотация
В статье представлены методические особенности основных этапов клонального микроразмножения клонового подвоя сливы ПК СК 1 (селекция ФГБНУ СКФНЦСВВ). Подвой проявляет высокую адаптивность к почвенно-климатическим условиям региона: имеет хорошую зимостойкость, устойчив к переувлажненным почвам и засухоустойчив, может расти на тяжелых почвах. Саженцы сливы на данном подвое имеют мощную корневую систему. Учитывая перспективность подвоя, актуальным является вопрос разработки и усовершенствования методов его ускоренного размножения. В рамках исследования была поставлена задача усовершенствования методологии клонального микроразмножения подвоя ПК СК 1. Исследования проводились в 2019-2022 гг. Установлено, что для введения в культуру in vitro оптимальным сроком отбора эксплантов является период активного роста побегов – II-III декады мая, когда регенерация составляет 78,1-93,8 %. Мультипликацию побегов эффективно проводить на среде MS c Fe-EDTA или MS c Fe-EDDHA и 6-БАП в количестве 1 мг/л, при этом на 4 пассаже образуется наибольшее количество побегов с 1 экспланта – в среднем 11,7 и 12,3 шт./эксп. Отмечено достоверное влияние фактора концентрации 6-БАП на количество образующихся побегов. Совместное влияние формы хелата железа и концентрации 6-БАП оказывает достоверное влияние на количество образующихся побегов только на 3-5 пассажах на среде MS c Fe-EDDHA. Этап укоренения подвоя ПК СК 1 можно проводить и на безгормональной среде МS с Fe-EDDHA. Эффективность корнеобразования составляет 57,1-61,8 %, в среднем образуется 2,4 корня на побег длиной от 1,2 до 5,1 см, при этом формируются качественные корни (не хрящеватые и не ломкие). Для этапа адаптации отбирают укорененные побеги высотой не менее 2 см, имеющие 2 и более корней длиной не менее 2-3 см. В качестве субстрата можно использовать смесь питательного грунта для растений «Агробалт», вермикулита, перлита в соотношении 3:1:1. После 4 недель адаптации процент адаптированных растений составил в среднем 87,5.
Об авторах
И. И. СупрунРоссия
Супрун И. И. − кандидат биологических наук, старший научный сотрудник
ул. им. 40-летия Победы, 39, Краснодар, 350901
М. А. Амосова
Россия
Амосова М. А. – кандидат сельскохозяйственных наук, заведующий лабораторией вирусологии
ул. им. 40-летия Победы, 39, Краснодар, 350901
О. В. Егорова
Россия
Егорова О. В. – младший научный сотрудник, лаборатория вирусологии
ул. им. 40-летия Победы, 39, Краснодар, 350901
Е. В. Лободина
Россия
Лободина Е. В. – младший научный сотрудник, селекционно-биотехнологическая лаборатория
ул. им. 40-летия Победы, 39, Краснодар, 350901
А. О. Авакимян
Россия
АвакимянА. О. – младшийнаучныйсотрудник, селекционно-биотехнологическая лаборатория
ул. им. 40-летия Победы, 39, Краснодар, 350901
Список литературы
1. Заремук Р. Ш., Кочубей А. А. Оценка качества плодов гибридов сливы домашней [Электронный ресурс]. Плодоводство и виноградарство Юга России. 2023;82(4):28-38. URL: https://journalkubansad.ru/pdf/23/04/03.pdf. DOI 10.30679/2219-5335-2023-4-82-28-38.
2. Заремук Р. Ш. Сорта сливы домашней для оптимизации южного сортимента // Субтропическое и декоративное садоводство. 2018;66:34-40. DOI: 10.31360/2225-3068-2018-66-34-40. EDN: VJVZMK. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=36286857.
3. Шерстобитов В. В., Бандурко И. А., Озерский П. В. Анализ данных сортоизучения сливы домашней (Prunus domestica L.) селекции Майкопской опытной станции – филиала ВИР. Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2022;183(2):113-121. DOI: 10.30901/2227-8834-2022-2-113-124.
4. Упадышева Г. Ю. О влиянии клоновых подвоев на продуктивность и долговечность деревьев сливы домашней. Селекция и сорторазведение садовых культур. 2017;4(1):145-148.
5. Плодоводство: уч. пособие. Под ред. Кривко Н. П. [и др.]. СПб.: Лань, 2023, 440 с.
6. Черников Е. А., Попова В. П., Кузнецова А. П. и др. Оценка продуктивности сливы на подвоях отечественной селекции и почвах с лимитирующими параметрами [Электронный ресурс]. Плодоводство и виноградарство Юга России. 2021;70(4):129-145. URL: http://journalkubansad.ru/pdf/21/04/12.pdf. DOI: 10.30679/2219-5335-2021-4-70-129-145. (Дата обращения: 20.06.2023 г.)
7. Сафаров Р. М., Ермин В. Г. Подбор привойно-подвойных комбинаций сливы русской для интенсивных технологий возделывания // Плодоводство и ягодоводство России. 2020;61:142-152. DOI 10.31676/2073-4948-2020-61-142-152.
8. Горбачева Н. Н. Оценка клоновых подвоев сливы в условиях Ленинградской области // Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета. 2017;4(49):11-15.
9. Кальченко Е. Ю., Ноздрачева Р. Г., Гладышева О. В. Особенности совместимости некоторых сорто-подвойных комбинаций сливы в питомнике // Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета. 2018;2(51):70-75.
10. Подвой ПК СК 1 / сайт: https://kubansad.ru/content/pk-sk-1/.
11. Mine Pakyurek, Serra Hepaksoy. A Study on In Vitro Propagation Possibilities of Some Clone Rootstocks of Prunus Species // International Journal of Scientifi c and Technological Research. 2019;5(9):65-84. DOI: 10.7176/JSTR/5-9-10.
12. Mutu (Sima) Nicoleta, Mîndrilă Gheorghița. Evaluation of hormonal balance infl uence on the micropropagation of some rootstocks plum // JOURNAL of Horticulture, Forestry and Biotechnology. 2020;24(3):37-40.
13. Ugur R. Development of in vitro sterilization protocol for DO-1 (Prunus domestica) rootstock // Applied ecology and environmental research. 2020;18(2):2339-2349.
14. Palaz E. B., Ugur R. Diff erent approaches to in vitro rooting possibilities in Prunus rootstocks // International Journal of Agricultural and Natural Sciences. 2023;6(1):33-40.
15. Thakur M., Sharma V., Luharc R. Propagation of plum (Prunus salicina L.) cultivar Frontier in vitro through control of shoot tip necrosis (STN) and validation of genetic integrity using ISSR markers // Plant Physiol. Rep. 2021;26(2):238–246.
16. Pakyurek M., Hepaksoy S. A. Study on In Vitro Propagation Possibilities of Some Clone Rootstocks of Prunus Species // International Journal of Scientifi c and Technological Research. 2019;5(9):65-84.
17. Методические рекомендации по использованию биотехнологических методов в работе с плодовыми, ягодными и декоративными культурами / Под ред. Е. Н. Джигадло. – Орёл: ГНУ ВНИИСПК, 2005. 50 с.
18. https://apk-volga.ru/khelat-zheleza-fe.
19. ГОСТ Р 54051-2010. Плодовые и ягодные культуры. Стерильные культуры и адаптированные микрорастения. М.: Стандартинформ, 2011. 11 с.
20. Супрун И. И., Винтер М. А., Федорович С. В., Лободина Е. В., Авакимян А. О., Аль-Накиб Е. А. Эффективность размножения in vitro клонового подвоя косточковых культур ПК СК 1 // Плодоводство и ягодоводство России. 2023;72:16-23. URL: https://elibrary.ru/item.asp?id=50489034.
21. Центр компетенций в области питомниководства. https://kubansad.ru/content/centr-kompetencij-v-oblasti-pitomnikovodstva/.
Рецензия
Для цитирования:
Супрун И.И., Амосова М.А., Егорова О.В., Лободина Е.В., Авакимян А.О. Особенности клонального микроразмножения клонового подвоя сливы ПК СК 1. Садоводство и виноградарство. 2024;(2):5-12. https://doi.org/10.31676/0235-2591-2024-2-5-12
For citation:
Suprun I.I., Amosova M.A., Egorova O.V., Lobodina E.V., Avakimyan A.O. Features of clonal micropropagation of plum PK SK 1 clonal rootstock. Horticulture and viticulture. 2024;(2):5-12. (In Russ.) https://doi.org/10.31676/0235-2591-2024-2-5-12